Allergietest
Allergietestsdienen zum Nachweis vonAllergienauf getesteteAllergene,an denen der untersuchte Mensch oder das untersuchte Tier leidet. Auch wenn systemische Reaktionen sehr selten vorkommen, sollten vorher dennoch die gebotenen Vorsichtsmaßnahmen getroffen werden, um schnell reagieren zu können. Die folgenden unterschiedlichen Verfahren werden hierbei angewandt:
In-vitro-Testverfahren
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]Bestimmung von Antikörpern
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]In Blutproben können sogenanntefreie IgE-Antikörpergemessen werden. Zum einen kann der Gesamt-IgE Spiegel gemessen werden, der alle freien IgE-Antikörper erfasst. Dieser Wert ermöglicht eine Aussage darüber, ob generell vermehrt IgE-Antikörper gebildet werden. Erhöhte Gesamt-IgE-Werte kommen aber nicht nur bei allergischen Erkrankungen vor, sondern auch bei Parasitenbefall und bestimmtenhämatologischen Erkrankungen.Zum anderen können auch Allergen-spezifische IgE-Antikörper nachgewiesen werden. Hierbei werden also die IgE-Spiegel ermittelt, die sich konkret gegen eine Allergenquelle richten.
Heute üblich sindFEIA (Fluoreszenz-Enzym-Immunoassay)undEIA (Enzym-Immunoassay)-Bestimmungen, die statt der früher gebräuchlichen radioaktiv (125I) markierten Reagenzien, enzymmarkierte Reagenzien einsetzen. Hier gilt für den gesunden Mensch ein Referenzbereich von <100 kU/L für das Gesamt-IgE. Messungen für Allergen-spezifisches IgE gelten als negativ für Werte <0,35 kUA/L. Klasse 1 (0,35–0,70 kUA/L) gilt als grenzwertig positiv. Positiv gelten die Klassen 2–6 (Klasse 2: 0,70–3,5 kUA/L; Klasse 3: 3,5–17,5 kUA/L, Klasse 4: 17,5–50 kUA/L; Klasse 5: 50–100 kUA/L; Klasse 6>100 kUA/L). Eher veraltete Messmethoden sindRIST (Radio-Immuno-Sorbens-Test)für das Gesamt-IgE undRAST(Radio-Allergo-Sorbens-Test)für Allergen-spezifisches IgE.
Die quantitative Messung von IgE-Antikörpern im Blut korreliert jedoch nur schlecht mit dem klinischen Bild, die Messung von IgE-Antikörpern im Blut erlaubt zwar eine Aussage über dieSensibilisierungeneines Allergikers, aber nur bedingt eine Einschätzung der Schwere der Symptome und gar keine Aussage über die Art der Symptome. Es kann auch sein, dass Allergen-spezifische IgE-Antikörper trotz Sensibilisierung nicht nachgewiesen werden können.
Mittlerweile gibt es einige Anbieter auf dem Markt, die nicht nur die Allergenquelle, sondern auch viele der für die Sensibilisierung relevanten Allergenkomponenten identifizieren. Da bei diesen Tests nicht die Antikörper gegen dieAllergenegemessen, sondern einzelneProteineder Allergene analysiert werden, ist der Test aussagefähiger als die vorgenannten Testmethoden. Verschiedene Technologien ermöglichen die Analyse spezifischer Antikörper gegen Allergene im Einzelansatz (Singleplex/Singleparametertest). In einem weiteren Testformat, dem Multiparametertest, werden hingegen viele verschiedene allergenspezifische Antikörper gleichzeitig bestimmt. Ein Allergie-Screening[1]mittels Multiparametertest ist derzeit keine Leistung der gesetzlichenKrankenversicherung.Der Vorteil dieser Sammeluntersuchung ist, dass mit relativ wenig Einsatz von Blut ein extrem breites Spektrum an Allergenen untersucht werden kann. Derzeit können mit dem umfangreichsten Multiplextest am Markt Sensibilisierungen auf bis zu 295 Allergene mit nur einer einzigen Blutprobe detektiert werden. Dies stellt besonders bei kleinen Kindern einen erheblichen Vorteil dar, aber auch Jugendliche und Erwachsene mit einer kompliziertenAnamneseprofitieren von der detaillierten Austestung.[2]Es werden allerdings auch Allergene bzw. Allergenkomponenten untersucht, die anamnestisch keinen Einfluss auf das Krankheitsbild haben.
Moderne Multiplextests vereinen das Wissen der molekularen Allergiediagnostik mit dem Ziel, das vollständige Sensibilisierungsmuster des Patienten zu beleuchten. Für den Arzt ist dies von großer Wichtigkeit, da basierend auf der molekularen Allergologie primäre Sensibilisierungen von Kreuzreaktivitäten unterschieden werden können. Zusätzlich sind einige Allergene mit sehr schweren, allergischen Reaktionen assoziiert, sogenannte Risikomarker, welche dem Arzt bei Vorhandensein vonIgE-Antikörpernsehr wichtige Informationen geben. Auch die Entscheidung, ob eineImmuntherapiesinnvoll ist, kann der Arzt anhand des Sensibilisierungsmusters treffen.[3]
Bestimmung von Entzündungsmarkern
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]- Histamin(2-(4-Imidazolyl)-ethylamin) ist einNaturstoff,der im menschlichen oder tierischenOrganismusalsGewebshormonundNeurotransmitterwirkt und auch imPflanzenreichund inBakterienweit verbreitet ist. Beim Menschen und anderen Säugetieren spielt Histamin eine zentrale Rolle beiallergischen Reaktionenund ist amImmunsystem,d. h. an der Abwehr körperfremder Stoffe beteiligt. Auch imMagen-Darm-Trakt,bei der Regulation derMagensäureproduktionund derMotilitätsowie imZentralnervensystembei der Steuerung desSchlaf-Wach-Rhythmusund derAppetitkontrollewirkt Histamin als wichtiger Regulator.Biochemischist es einbiogenes Amin,das aus derAminosäureHistidingebildet wird und insbesondere inMastzellen,basophilen GranulozytenundNervenzellengespeichert wird.
- Leukotrienewurden inLeukozyten(weißen Blutkörperchen) entdeckt und sind chemisch von derArachidonsäure(einer vierfach ungesättigtenFettsäure) abgeleitet. Sie selbst besitzen drei Doppelbindungen und gehören zur Stoffgruppe derEikosanoide.Ihre Rolle imStoffwechselsteht im Zusammenhang mitallergischenbzw. entzündlichen Reaktionen des Körpers (z. B.Asthma bronchiale).
Eosinophiles kationisches Protein(ECP)
- DasEosinophile kationische Protein(engl. eosinophil cationic protein, ECP) wird selektiv ineosinophilen Granulozytensynthetisiert. Es ist nebenEDNeines der Hauptkomponenten der eosinophien Granula. Bei beiden Proteinen handelt es sich umRibonukleasender SuperfamilieRNase A.Die eosinophilen Granulozyten spielen eine bedeutende Rolle bei derPathogenesedes Asthma bronchiale. Es besteht eine enge Korrelation zwischen Anzahl der Eosinophilen und der ECP-Konzentration. Da auch eine Korrelation zwischen der ECP-Konzentration im Blut und dem Ausmaß des Asthmaschweregrads besteht, kann dieser Parameter z. B. einen Beitrag zur Verlaufskontrolle einer Asthmatherapie leisten.
Zelluläre Tests
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]DerLymphozytentransformationstest(LTT) ist ein Laborverfahren zum Nachweis antigen-spezifischer T-Lymphozyten.Er findet seine Anwendung in derImmunfunktionsdiagnostikderMedizin.Seit wenigen Jahren wird er auch in derAllergologiezum Nachweis bestimmterallergischen Reaktiondes verzögerten Typs (IV) (z. B. Medikamentenallergie, Metallallergie) und in der Erregerdiagnostik (z. B.Borreliosediagnostik) eingesetzt.
Mehrere Universitätskliniken und spezialisierte Institute haben das Verfahren standardisiert. Für die Medikamentenallergie wurde der Test 2006 in die Empfehlungen der Deutschen Gesellschaft für Immunologie und Allergologie (DGAI) aufgenommen. Bei anderen allergologischen Fragestellungen wird allerdings die klinische Bedeutung einer nachgewiesenen Sensibilisierung noch kontrovers diskutiert. Daher sollte der LTT bei allergologischen Fragestellungen nur in Ergänzung zumEpikutantesteingesetzt werden bzw. dann, wenn dieser nicht durchführbar ist.
Hauttests
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]Pricktest
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Der Pricktest(englisch: prick = Einstich)dient zum Nachweis einer sogenanntenTyp-I-Allergie,wie zum Beispiel einerSensibilisierunggegenüberPollenoder ausTierepithelien[4]freigesetzten Substanzen. Hierbei wird ein definierter Allergenextrakt auf die Haut aufgetropft und diese anschließend mit einerLanzetteleicht angestochen, sodass die jeweilige Substanz in die Oberhaut eindringen kann. Die Testreaktion kann nach 20 Minuten im Vergleich zu zwei immer mitdurchgeführten Leertestungen (PositivkontrollemitHistaminund wirkstofffreierNegativkontrolle) abgelesen werden. Beurteilt werden die Hautrötung und die Quaddelgröße. Der Pricktest ist meist schmerzfrei.
Eine Unterform der Pricktestung ist der so genannte Prick-to-Prick-Test, bei dem zum BeispielLebensmittelgetestet werden können, indem zuerst das Lebensmittel und dann die Haut angestochen wird.
Intrakutantest
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]Hierbei wird eine definierte Menge eines Allergenextraktes (z. B.Insektengifteoder Nahrungsmittelextrakte)intrakutaninjiziert und ebenfalls nach 20 Minuten gegen einen Leertest (s. o.) abgelesen. Es besteht jedoch die Gefahr einer hochgradigen allergischen Reaktion. Er dient auch zum Nachweis einer Typ-I-Allergie.[5]
Reibtest
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]Allergietest, welcher sich auch zum Nachweis von Typ-I-Allergien eignet, bei dem die Haut zunächst oberflächlich angeritzt wird und anschließend das zu testende Allergen (zum Beispiel Tierhaare oder auch Lebensmittel) nativ eingerieben wird. Die Testablesung findet ebenfalls nach 20 Minuten statt. Diese Testmethode wird dann verwendet, wenn eine starke allergische Reaktion erwartet wird und sich somit das Einstechen der Haut wie beim Pricktest nicht für die Testung eignet.
Epikutantest
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]Dieser Test dient dem Nachweis einer Sensibilisierung auf eine sogenannteTyp-IV-Allergie,wie zum Beispiel gegenüberNickelsalzen(Nickelsulfat) oderDuftstoffen.Hierbei werden definierte Zubereitungen der Allergene in Trägersubstanzen (wieVaselineoder Wasser) auf die Haut unter Testkammern aufgeklebt. Die Testablesung sollte jeweils nach 24, 48 und 72 Stunden erfolgen (in Ausnahmefällen auch noch länger). Es wird hierbei auch der Reaktionsverlauf (steigende oder fallende Reaktion) über die Zeit bewertet.
Derrepeated open application testwird verwendet, um eine unklare oder nicht eindeutige Reaktion beim Epikutantest abzuklären. Zur Beurteilung der klinischen Relevanz wird das fragliche Allergen eine Woche lang zweimal täglich auf ein abgegrenztes Areal auf der Innenseite des Oberarmes aufgetragen.[6]
Atopie-Patch-Test
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]Diese Sonderform des Epikutantests wird verwendet, um Typ-I-Allergene (Inhalationsallergene) alsTriggerdesatopischen Ekzemszu identifizieren. Als Trägersubstanz wird Vaseline verwendet. Das Testareal sollte bei Testbeginn symptomfrei sein. Als positive Testreaktion tritt eine Störung der Barrierefunktion der Haut auf, die zu einem Ekzem führt.[7]
Provokationstests
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]Nasale Provokationstestung
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]Dieallergische Rhinokonjunktivitis(Allergische Rhinitis, Heuschnupfen) ist eine der häufigsten allergischen Erkrankungen. Sie beginnt vielfach in der Kindheit, führt oft über Jahrzehnte zu lästigen Symptomen und hat Auswirkungen auf das Sozialleben, die schulische Leistungsfähigkeit und die Arbeitsproduktivität der Patienten. Sie wird klinisch definiert als einesymptomatische Überempfindlichkeitsreaktion der Nase,induziert durch eine IgE-vermittelte Entzündung derNasenschleimhautinfolge Allergenexposition.
Ein positives Resultat von mastzellgebundenem allergenspezifischemIgEim Hauttest oder von spezifischem IgE im Serum belegt eineImmunantwortauf ein Allergen, ist jedoch nicht gleichbedeutend mit dem Nachweis einer allergischen Erkrankung. Ziel des nasalen Provokationstests mit Allergenen ist es, Patienten mit einer klinisch aktuellen Sensibilisierung (Allergie) gegen inhalative Allergene von solchen Patienten zu trennen, die zwar eine Sensibilisierung, aber unter natürlichen Expositionsbedingungen keine Symptomatik aufweisen (klinisch stumme Sensibilisierung), von diagnostischer Bedeutung insbesondere bei derRhinitis.
Der nasale Provokationstest (NPT) reproduziert die Reaktion der Nasenschleimhaut auf einen inhalierbaren Stoff aus der Umwelt unter kontrollierten Bedingungen. Es wird das vermutete Allergen auf die Nasenschleimhaut gebracht und die resultierende klinische Sofortreaktion dokumentiert. Die Veränderung der nasalen Luftdurchgängigkeit nach Allergenapplikation wird mittels aktiver anteriorerRhinomanometriegemessen, Niesreiz, Sekretion und Fernsymptome werden mittels eines Scores erfasst.[8]
Lungenfunktionsdiagnostik
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]Peak-flow-Messung
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]DerPeak Flowist ein Messwert, der angibt, mit welcher Geschwindigkeit eine Person Luft aus ihrerLungeblasen kann. Gemessen wird dieser mit einemPeak-Flow-Meteroder einemSpirometer.Bei gesunden Menschen liegt der Peak-Flow-Wert etwa zwischen 400 und 700 l/min. Bei Personen mit Atembeschwerden, wie zum BeispielAsthma bronchiale,liegt der Wert darunter. Bei Asthmatikern sind die Atemwege verengt und dadurch ist die Ausblasmenge pro Minute wesentlich geringer. Aus diesem Grund wird der Peak Flow bei Patienten mit Atemwegserkrankungen als so wichtig angesehen, wie das tägliche Blutdruckmessen bei Patienten mit Bluthochdruck.
Bronchospasmolysetest
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]Bei derBronchospasmolysewird die Reversibilität der bronchialen Obstruktion getestet. Hierzu wird untersucht, ob man beim Patienten durch Anwendung einesβ2-Sympathomimetikums(beispielsweise:Terbutalin,FenoteroloderSalbutamol) eine Verringerung des Atemwegswiderstandes erzielen kann. Diese geht mit einer Zunahme derEinsekundenkapazität(FEV1) einher. Typischerweise ist die Obstruktion im Rahmen eines Asthma bronchiale reversibel, die Obstruktion bei einer chronisch obstruktiven Bronchitis ist niemals vollkommen reversibel.
Inhalative Provokationen
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]Unspezifische inhalative Provokation
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]Unter unspezifischen inhalativen Provokationen versteht man Untersuchungen mit bronchokonstriktorisch wirksamen pharmakologischen Substanzen. Die Untersuchung ist bei Patienten mit chronischem Husten und/oder Atemnot unklarer Genese indiziert, wenn spontan keine messbare Obstruktion vorliegt. Zur Durchführung wird heute vorwiegend derMethacholintestmit dem CholinergikumMethacholinverwendet. Im Vergleich zu anderen Substanzen wieHistaminoderCarbacholist mit unerwünschten lokalen oder systemischen Neben- oder Spätwirkungen nicht zu rechnen.[9]
Spezifische inhalative Provokation
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]Spezifische inhalative Provokationen dienen dazu, ein bestimmtesAllergenals Auslöser eines allergischenAsthma bronchialenachzuweisen. Mögliche Indikationen liegen auch im Bereich vonarbeitsmedizinischenGutachten(zum Beispiel Bäckerasthma) oder zum definitiven Nachweis des auslösenden Allergens, beispielsweise wenn sich gravierendetherapeutischeKarenzmaßnahmen oder soziale Konsequenzen (Berufswechsel) ergeben. Als weitere Indikation für spezifische Provokationen sind Insektenstiche, bei denen man in Einzelfällen den Therapieerfolg bei einerHyposensibilisierungbeiInsektengiftallergienüberprüfen kann.[10]
Siehe auch
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]Weblinks
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Literatur
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]- Peter Angerer:Allergologie-Handbuch: Grundlagen und klinische Praxis.Schattauer, Stuttgart/New York 2006,ISBN 3-7945-1972-8.
Einzelnachweise
[Bearbeiten|Quelltext bearbeiten]- ↑Allergie-Screening(desvom 11. März 2012 imInternet Archive)Info:Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäßAnleitungund entferne dann diesen Hinweis.bei tk.de.
- ↑Platteel ACM, van der Pol P, Murk JL, Verbrugge-Bakker I, Hack-Steemers M, Roovers THWM, Heron M. A comprehensive comparison between ISAC and ALEX2 multiplex test systems. Clin Chem Lab Med. 2022 Apr 27;60(7):1046-1052.doi:10.1515/cclm-2022-0191.PMID 35470638.
- ↑Hamilton RG, Croote D, Lupinek C, Matsson P. Evolution Toward Chip-Based Arrays in the Laboratory Diagnosis of Human Allergic Disease. J Allergy Clin Immunol Pract. 2023 Aug 18:S2213-2198(23)00921-2.doi:10.1016/j.jaip.2023.08.017.Epub ahead of print.PMID 37597694
- ↑Helmholtz Zentrum München, Allergieinformationsdienst:Tierallergien.
- ↑Insektengiftallergie – Leitlinie der Deutschen Gesellschaft für Allergologie und klinische Immunologie (DGAI).(PDF; 129 kB) In:Allergo J.13, 2004, S. 186–190.
- ↑P. Altmeyer:Enzyklopädie der Dermatologie, Venerologie, Allergologie, Umweltmedizin.2002,ISBN 3-540-41361-8(online[abgerufen am 4. März 2008] EintragRepeated open application test).
- ↑P. Altmeyer:Enzyklopädie der Dermatologie, Venerologie, Allergologie, Umweltmedizin.2002,ISBN 3-540-41361-8(online[abgerufen am 4. März 2008] EintragAtopie-Patch-Test).
- ↑Allergische Rhinokonjunktivitis – Leitlinien der Deutschen Gesellschaft für Allergologie und klinische Immunologie(vom 24. Oktober 2004 imInternet Archive)In:Allergologie.26 (4), 2003, S. 147–162.
- ↑Validität von Bodyplethysmographie und Spirometrie zur Erfassung der bronchialen Hyperreaktivität mit Methacholin.(desvom 22. Dezember 2015 imInternet Archive)Info:Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäßAnleitungund entferne dann diesen Hinweis.(PDF; 102 kB) Berufsgenossenschaftliches Forschungsinstitut für Arbeitsmedizin (BGFA), Bochum.
- ↑E. Gonsior, M. Henzgen, R. A. Jörres, R. F. Kroidl, R. Merget, F.-W. Riffelmann, G. Wallenstein:Leitlinie für die Durchführung bronchialer Provokationstests mit Allergenen.Deutsche Gesellschaft für Allergologie und klinische Immunologieund Deutsche Gesellschaft für Pneumologie. In:Pneumologie.Band56,Nr.3,März 2002,ISSN1438-8790,S.187–198,doi:10.1055/s-2002-20553.
